Impacto de las variantes de AmpC mediadas por plásmidos en la eficacia clínica de Ceftazidima-Avibactam.

🧬 El Mecanismo: Más allá de las Carbapenemasas.

Tradicionalmente, la resistencia a CZA en Klebsiella pneumoniae se asociaba a mutaciones en la carbapenemasa KPC (como la variante D179Y). Sin embargo, este nuevo hallazgo desplaza el foco:

 * Mutaciones en AmpC: Se trata de variantes de AmpC (como las derivadas de CMY o DHA) que presentan sustituciones o deleciones en el lazo \Omega (omega) o en el lazo distal R2.

 * Afinidad por el Avibactam: Estas modificaciones estructurales reducen la capacidad del avibactam para inhibir la enzima o aumentan la eficiencia catalítica de la AmpC contra la ceftazidima, superando el bloqueo del inhibidor.

 * Independencia de Carbapenemasas: El hecho de que no requiera una carbapenemasa para conferir resistencia significa que el patógeno puede evadir tratamientos de última línea sin activar las alarmas habituales de los tests rápidos (como los ensayos inmunocromatográficos para KPC, NDM, OXA-48).

⚠️ El Peligro del Fenotipo "Engañoso"

El perfil en el antibiograma puede ser sutil y llevar a errores de reporte:

 * Cebado de Resistencia: La bacteria puede mostrarse sensible a carbapenémicos (Ertapenem, Meropenem) pero resistente a CZA. Esto rompe la lógica diagnóstica habitual donde CZA se reserva para organismos ya resistentes a carbapenémicos.

 * Efecto Inóculo: En algunos casos, la CMI (Concentración Micelar Mínima) de CZA puede estar en el límite de sensibilidad según los puntos de corte de EUCAST o CLSI, resultando en fallos terapéuticos in vivo.

 * Falsos Negativos en Screening: Los discos de combinación con cloxacilina o ácido borónico podrían no mostrar una sinergia clara si la mutación altera drásticamente la cinética enzimática.

📈 Implicaciones para la Vigilancia y el Tratamiento

 * Vigilancia Genómica: Se vuelve imperativo el uso de secuenciación de nueva generación (WGS) para identificar estas variantes de pAmpC, ya que las pruebas fenotípicas estándar no distinguen entre una AmpC salvaje y una mutada con resistencia a CZA.

 * Uso de CZA: El uso empírico de CZA podría verse comprometido en centros donde estas pAmpC circulen. Se refuerza la necesidad de cultivos con antibiograma específico para CZA antes de desescalar.

 * Alternativas: Dependiendo de la variante, opciones como Cefiderocol o nuevas combinaciones (como Aztreonam-Avibactam si hubiera metalo-beta-lactamasas asociadas) deben ser evaluadas cuidadosamente.

1. El "Hotspot" Mutacional: El Lazo \Omega

En las enzimas AmpC (como CMY-2), la resistencia a CZA suele originarse por deleciones o sustituciones en el lazo \Omega (residuos 285 a 295).

 * El Mecanismo: Estas alteraciones ensanchan el sitio activo de la enzima. Esto permite que la ceftazidima (una molécula voluminosa) entre con mayor facilidad, mientras que el avibactam pierde afinidad de unión, dejando de proteger al antibiótico.

 * Ejemplo clave: La variante CMY-185. Presenta una deleción de tres aminoácidos que le otorga una CMI a CZA de >64 \mu g/mL, pero mantiene una susceptibilidad relativa a los carbapenémicos (a veces con CMIs de Meropenem en rangos de "Sensible-Incremento de dosis").

2. Algoritmo de Detección en el Laboratorio

Ante una Klebsiella con un perfil inusual, se sugiere seguir este flujo de trabajo para no pasar por alto estas pAmpC mutadas:

Paso A: Identificar el "Perfil de Sospecha"

Sospecha de pAmpC mutada si encuentras:

 * Resistencia a Ceftazidima y Ceftriaxona.

 * Resistencia a Ceftazidima-Avibactam (CZA).

 * Sensibilidad (o sensibilidad intermedia) a Ertapenem y Meropenem.

 * Pruebas de carbapenemasas (inmunocromatografía o PCR de los 5 genes grandes) Negativas.

Paso B: Pruebas Fenotípicas de Confirmación

 * Sinergia con Cloxacilina: Utiliza discos de Cefotaxima/Ceftazidima con y sin cloxacilina. Si la zona de inhibición aumenta \geq 5 mm con cloxacilina, confirmas la presencia de una AmpC hiperproducida o mutada.

 * Test de Cefoxitina: Las AmpC suelen conferir resistencia a Cefoxitina. Si la cepa es sensible a Cefoxitina pero resistente a CZA, es menos probable que sea una AmpC clásica y más probable que sea una mutación específica.

3. Comparativa de Perfiles (Tabla Diagnóstica)

| Antibiótico / Test | KPC (Clásica) | NDM (Metalo) | pAmpC Mutada |

|---|---|---|---|

| CZA | Resistente (o S) | Resistente | Resistente |

| Meropenem | Resistente | Resistente | Sensible / I |

| Cefoxitina | Variable | Resistente | Resistente |

| Inmunocromatografía | Positivo (KPC) | Positivo (NDM) | NEGATIVO |

| Cloxacilina Sinergia | No | No | SÍ |

4. Implicación Terapéutica Directa

El mayor peligro es que, al ver sensibilidad a carbapenémicos, el clínico decida usar Meropenem. Sin embargo, bajo presión selectiva, estas cepas pueden desarrollar rápidamente mecanismos adicionales (como pérdida de porinas) que las vuelven pan-resistentes en cuestión de días.

El Arte de Ver lo Invisible: Guía Completa de Tinciones y Observación de Microorganismos

¿Alguna vez te has preguntado cómo los científicos logran distinguir una bacteria de otra si casi todas son transparentes? El mundo microscópico es vasto y complejo, y para explorarlo no basta con un buen microscopio; necesitamos "maquillar" a los protagonistas.

En este post, exploraremos las metodologías esenciales para diferenciar las estructuras de los microorganismos, desde el montaje en fresco hasta las tinciones diferenciales más avanzadas.

1. Observación en Fresco: La Vida en Directo

Antes de aplicar color, a veces queremos ver a los microorganismos en su estado natural. El montaje en fresco es la técnica más sencilla y rápida.

 * ¿Para qué sirve? Para observar microorganismos vivos, su movimiento real y sus estructuras naturales sin alteraciones por químicos.

 * ¿Qué vemos? Bacterias, hongos unicelulares, protozoos y hasta helmintos (gusanos).

 * El desafío: Como las células son transparentes, se requiere jugar con la iluminación del microscopio (bajando el condensador o cerrando el diafragma) para crear contraste.

2. El Mundo del Color: Las Tinciones

Cuando la observación en fresco no es suficiente, recurrimos a las tinciones. Un colorante es básicamente un compuesto orgánico con un "anillo de benceno" (el solvente), un "cromóforo" (el que da el color) y un grupo "auxocromo" (el que permite que el color se pegue a la célula).

Existen dos tipos principales de colorantes según su carga eléctrica:

| Tipo de Tinción | Carga del Cromóforo | Afinidad | Ejemplos |

|---|---|---|---|

| Básicas (Catiónicas) | Positiva (+) | Se unen a células (que tienen carga negativa) | Cristal violeta, Azul de metileno, Safranina |

| Ácidas (Aniónicas) | Negativa (-) | Son repelidas por la célula, tiñen el fondo | Eosina, Nigrosina, Tinta china |

3. Tinciones Diferenciales: El "DNI" Bacteriano

A diferencia de la tinción simple (que usa un solo color para ver formas), las tinciones diferenciales utilizan varios reactivos para distinguir grupos de bacterias.

A. La famosa Tinción de Gram

Es la técnica reina en microbiología. Divide a las bacterias en dos grandes grupos según su pared celular:

 * Gram Positivas: Retienen el cristal violeta y se ven púrpuras.

 * Gram Negativas: Se decoloran y aceptan el colorante de contraste (safranina), viéndose rosas o rojas.

B. Tinción Ácido-Resistente (Ziehl-Neelsen)

Se usa específicamente para detectar bacterias con paredes cerosas (ricas en ácido micólico), como las del género Mycobacterium (causantes de la tuberculosis). Estas bacterias no se tiñen bien con Gram, por lo que necesitan calor y fucsina para que el color penetre.

4. Tinciones de Estructuras Especiales

A veces no queremos ver a toda la bacteria, sino a sus "accesorios":

 * Endosporas: Estructuras de resistencia que sobreviven a todo. Se usa Verde de Malaquita y calor para lograr que el tinte penetre su gruesa capa.

 * Cápsulas: Capas gelatinosas que protegen a la bacteria. Se usa tinta china para teñir el fondo, dejando la cápsula como un "halo" brillante alrededor de la célula.

 * Flagelos: Son tan delgados que el microscopio óptico no los ve. Se usa la técnica de Leifson, que engrosa el flagelo con ácido tánico antes de teñirlo.

Consejos de Laboratorio (Pro-Tips)

Si vas a realizar estas prácticas, no olvides:

 * Limpieza total: Asegúrate de que tus portaobjetos estén libres de grasa.

 * Enfoque progresivo: Comienza siempre en 10X, pasa a 40X y usa aceite de inmersión solo si es necesario para 100X.

 * Seguridad primero: Los hisopos y muestras biológicas deben pasar por el mechero o desecharse en contenedores de riesgo biológico (guardián).

🧪 Protocolo: El Paso a Paso de la Tinción de Gram

Antes de empezar, recuerda que el secreto de una buena tinción no está solo en los colorantes, sino en la fijación inicial de la muestra.

1. Preparación y Fijación (El cimiento)

 * Extensión: Coloca una pequeña gota de agua destilada o solución salina en el centro de un portaobjetos limpio. Con un asa de siembra esterilizada, toma una pizca de la colonia bacteriana y mézclala suavemente hasta crear una película fina.

 * Secado: Deja que se seque al aire completamente. No soples (puedes contaminar o mover la muestra).

 * Fijación al calor: Pasa el portaobjetos rápidamente por la llama del mechero 2 o 3 veces. Esto "pega" las bacterias al vidrio para que no se laven con los reactivos.

2. El Ciclo de los Cuatro Reactivos

Sigue este orden estrictamente (puedes usar la mnemotecnia C-L-A-S: Cristal, Lugol, Alcohol, Safranina):

| Paso | Reactivo | Tiempo | Función |

|---|---|---|---|

| 1. Colorante Primario | Cristal Violeta | 1 minuto | Tiñe todas las células de color púrpura. |

| 2. Mordiente | Lugol (Yodo) | 1 minuto | Forma un complejo cristal-yodo que "atrapa" el color en el interior celular. |

| 3. Decoloración | Alcohol-Acetona | 10-15 segundos | El paso crítico. Disuelve lípidos en Gram (-) para que pierdan el color. |

| 4. Contratinción | Safranina | 30-45 segundos | Tiñe las células que quedaron incoloras de rosa/rojo. |

> Nota sobre el lavado: Entre cada paso, enjuaga suavemente con agua destilada (o corriente a chorro muy fino) para eliminar el exceso de reactivo. No proyectes el agua directamente sobre la muestra. 

3. Resultados bajo el Microscopio

Una vez terminada la safranina, lava, seca al aire (o con papel absorbente sin frotar) y observa en el objetivo de 100X (inmersión):

 * Bacterias Gram Positivas (G+): Se verán de color púrpura o violeta intenso. Tienen una capa gruesa de peptidoglicano que retuvo el complejo cristal-yodo.

 * Bacterias Gram Negativas (G-): Se verán de color rosa o rojizo. Su capa de lípidos se disolvió con el alcohol, dejando salir el violeta y permitiendo la entrada de la safranina.

💡 Errores Comunes que debes evitar:

 * Sobre-decoloración: Si dejas el alcohol demasiado tiempo, hasta las Gram positivas perderán el color y verás todo rosa.

 * Fijación excesiva: Si calientas demasiado el portaobjetos, puedes romper la morfología de las bacterias y verás "escombros" celulares.

 * Muestra muy gruesa: Si pones demasiada bacteria, los colorantes no penetrarán bien y verás cúmulos de color indefinido.

Hipoalbuminemia Sérica: Causas y Consecuencias interpretación de resultados

 La hipoalbuminemia se refiere a una concentración anormalmente baja de albúmina en la sangre, generalmente por debajo de 3.5 g/dL.

.

 La albúmina es una proteína crucial producida por el hígado que desempeña varias funciones vitales en el cuerpo, como:

 Mantener la presión oncótica (presión coloidosmótica): Esta presión ayuda a retener los líquidos dentro de los vasos sanguíneos. Cuando los niveles de albúmina disminuyen, esta presión también lo hace, lo que provoca que el líquido se filtre hacia los tejidos, causando hinchazón (edema), especialmente en las piernas, los pies y la cara, y acumulación de líquido en el abdomen (ascitis).

 Transporte de moléculas: La albúmina transporta una variedad de sustancias por todo el cuerpo, incluyendo hormonas, vitaminas, ácidos grasos, enzimas y medicamentos. Los niveles bajos pueden afectar el transporte y la eficacia de estas sustancias.

 Función como marcador de salud: La hipoalbuminemia no es una enfermedad en sí misma, sino un signo de que existe un problema de salud subyacente. Su interpretación es clave para identificar la causa de fondo.

Causas principales de hipoalbuminemia

La interpretación de la hipoalbuminemia se centra en identificar la causa que la origina. Las causas se pueden agrupar en tres categorías principales:

  Disminución de la producción de albúmina:

    Enfermedad hepática: Es una de las causas más comunes. El hígado es el único órgano que produce albúmina. Enfermedades crónicas como la cirrosis, la hepatitis o el hígado graso severo pueden dañar el hígado y reducir su capacidad para sintetizar esta proteína.

   Desnutrición severa: La falta de una ingesta adecuada de proteínas puede llevar a que el cuerpo no tenga los "bloques de construcción" necesarios para producir albúmina. Esto es frecuente en pacientes con enfermedades crónicas, cáncer o trastornos alimentarios.

 Aumento de la pérdida de albúmina:

   Enfermedad renal: En condiciones como el síndrome nefrótico, los riñones pierden su capacidad para retener proteínas, y grandes cantidades de albúmina se eliminan a través de la orina (proteinuria).

    Pérdida a través del tracto gastrointestinal: Algunas enfermedades digestivas como la enfermedad de Crohn o la enteropatía perdedora de proteínas pueden causar una pérdida anormal de albúmina desde el intestino.

   Quemaduras extensas: Las quemaduras graves pueden provocar una pérdida significativa de albúmina a través de la piel dañada.

  Aumento del catabolismo (destrucción) o redistribución de la albúmina:

    Inflamación y sepsis: En estados inflamatorios agudos, como infecciones graves o sepsis, el cuerpo acelera la destrucción de la albúmina.

    Postoperatorio y traumatismos: Después de una cirugía mayor o un trauma severo, la albúmina puede redistribuirse desde el torrente sanguíneo a los tejidos, lo que causa una caída temporal en los niveles séricos.

    Sobrehidratación: Una hidratación excesiva puede diluir la concentración de albúmina en la sangre, lo que se refleja como hipoalbuminemia en los análisis de laboratorio.

Síntomas de la hipoalbuminemia

Los síntomas suelen estar relacionados con la disminución de la presión oncótica y la afección subyacente. Pueden incluir:

  Hinchazón (edema): El signo más característico, que se manifiesta como hinchazón en las extremidades, la cara o el abdomen.

  Fatiga y debilidad general.

  Pérdida de apetito y náuseas.

  Piel seca y escamosa.

En casos severos, la hipoalbuminemia puede aumentar el riesgo de complicaciones, como una mayor susceptibilidad a infecciones, disfunción de órganos y una mala recuperación de enfermedades o cirugías.

Diagnóstico y tratamiento

La hipoalbuminemia se diagnostica con un simple análisis de sangre. La interpretación de este resultado debe ser siempre en el contexto clínico del paciente, evaluando otros parámetros de laboratorio (como pruebas de función hepática y renal) y los síntomas presentes.

El tratamiento no se centra en aumentar directamente la albúmina (aunque en casos agudos se puede administrar albúmina intravenosa), sino en tratar la causa subyacente. Por ejemplo, si la causa es una enfermedad hepática, el tratamiento se dirigirá a mejorar la función del hígado; si es desnutrición, se enfocará en una terapia nutricional adecuada; y si es una enfermedad renal, en controlar la pérdida de proteínas.

Importancia del Analisis de Elastasa en el Laboratorio

La elastasa pancreática es una enzima digestiva producida por el páncreas que desempeña un papel fundamental en la descomposición de las proteínas durante la digestión.

 A diferencia de otras enzimas digestivas, la elastasa se mantiene estable a su paso por el tracto gastrointestinal, lo que la convierte en un marcador ideal para evaluar la función exocrina pancreática. La medición de los niveles de elastasa en heces ayuda a diagnosticar afecciones que afectan la capacidad del páncreas para producir suficientes enzimas digestivas.

Esta prueba no invasiva se utiliza ampliamente para evaluar la insuficiencia pancreática, que puede ser consecuencia de pancreatitis crónica, fibrosis quística o tumores pancreáticos. También es útil para monitorizar la eficacia de la terapia de reemplazo enzimático en pacientes con trastornos pancreáticos.

La prueba se realiza para evaluar la función exocrina pancreática y detectar insuficiencia. Es especialmente útil para:

⁃ Diagnosticar pancreatitis crónica u otras afecciones que causan insuficiencia pancreática

⁃ Evaluar síndromes de malabsorción, como la enfermedad celíaca o la enfermedad de Crohn

⁃ Monitorear a pacientes con fibrosis quística o cáncer de páncreas

⁃ Determinar la necesidad de terapia de reemplazo enzimático

Momento recomendado

La prueba se recomienda cuando un paciente presenta síntomas que sugieren insuficiencia pancreática o malabsorción, como:

⁃ Diarrea crónica

⁃ Esteatorrea (heces grasas y malolientes)

⁃ Pérdida de peso inexplicable

⁃ Dolor o malestar abdominal

⁃ Deficiencias nutricionales, especialmente de vitaminas liposolubles (A, D, E, K)

Muestra requerida

Muestra de heces

Para esta prueba se requiere una pequeña muestra de heces. Se proporciona al paciente un recipiente estéril e instrucciones sobre cómo recolectar la muestra. Las heces no deben estar contaminadas con orina ni agua para garantizar resultados precisos.

La prueba de elastasa pancreática es esencial para diagnosticar y tratar la insuficiencia pancreática exocrina. La detección temprana puede ayudar a prevenir complicaciones como la desnutrición grave, la osteoporosis y el retraso del crecimiento en niños. También facilita la personalización de los planes de tratamiento, incluyendo modificaciones dietéticas y terapia de reemplazo enzimático.

No se requiere preparación especial para la prueba. Sin embargo, se puede recomendar al paciente que evite ciertos medicamentos, como suplementos enzimáticos, inhibidores de la bomba de protones o antibióticos, antes de la toma de la muestra, ya que pueden interferir con los resultados. El profesional de la salud proporcionará orientación específica según el historial médico del paciente.

El análisis de los niveles de elastasa pancreática se realiza mediante métodos de inmunoensayo:

Método manual: Implica el uso de kits de ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA) para la medición cuantitativa de la elastasa pancreática en heces.

 ⁃ Requiere un manejo preciso de reactivos y estándares de calibración por parte de personal de laboratorio capacitado. Método automatizado: 

⁃ Utiliza analizadores de inmunoensayo avanzados para realizar pruebas de alto rendimiento con mínima intervención humana. 

⁃ La automatización garantiza resultados consistentes y precisos, especialmente en laboratorios que procesan grandes volúmenes de muestras.

Rango de referencia

200-500 ug/g en heces

-Función pancreática normal: >200 pg/g en heces 

⁃ Insuficiencia leve a moderada. 100-200 pg/g en heces 

⁃ Insuficiencia grave: <100 ug/g en heces

Los resultados de la prueba de elastasa pancreática proporcionan información sobre la función exocrina pancreática:

x Niveles normales (zuu pgng heces): ⁃ Indica una producción adecuada de enzimas pancreáticas y una función digestiva normal.

Niveles reducidos (100-200 pg/g en heces):

 ⁃ Sugiere una función de leve a Insuficiencia pancreática moderada, que puede causar síntomas sutiles de malabsorción.

Niveles muy reducidos (<100 ug/g en heces):

 ⁃ Indica claramente insuficiencia pancreática grave, comúnmente observada en pancreatitis crónica, fibrosis quística o cáncer de páncreas avanzado.

Los resultados deben interpretarse junto con los síntomas clínicos y otros hallazgos diagnósticos para confirmar el diagnóstico.

La prueba de elastasa pancreática se prefiere a métodos más antiguos, como la prueba de grasa fecal de 72 horas, debido a su conveniencia, no invasividad y fiabilidad. Es particularmente útil en poblaciones pediátricas y personas que no pueden someterse a procedimientos invasivos.

En algunos casos, pueden requerirse pruebas adicionales, como la amilasa sérica, los niveles de lipasa o estudios de imagen (p. ej., tomografía computarizada o resonancia magnética del páncreas), para proporcionar una evaluación integral de la salud pancreática. La prueba también es valiosa para monitorear la eficacia de la terapia de reemplazo enzimático, asegurando una dosificación óptima y mejorando la calidad de vida del paciente.

¿Que determina la velocidad de Sedimentación Globular?

 VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN GLOBULAR (VSG)

• La velocidad de sedimentación globular (VSG, tasa de sedimentación o "reacción de Biernacki") es una medida inespecífica de inflamación que se usa comúnmente como una prueba de detección médica "in vitro". 
• La prueba fue inventada en 1897 por el médico polaco Edmund Biernacki y publicada en polaco. En 1918, el patólogo sueco Robert Fåhræus declaró lo mismo y, junto con Alf Vilhelm Westergren, publicó en inglés.
• La VSG mide la velocidad (mm/h) a la cual los glóbulos rojos forman agregados que se sedimentan cuando la sangre anticoagulada se deja en un tubo vertical. Por lo tanto, no es la medida de un analito sino de un fenómeno físico. Este mecanismo incluye tres fases: ➡️agregacion,➡️sedimentacion y ➡️empaque.
• Es un estimador de la inflamación ♨️general porque depende de la concentración de proteínas de fase aguda que circulan en la sangre, particularmente el fibrinógeno; estas proteínas aumentan la constante dieléctrica en la sangre y neutralizan las cargas negativas en la superficie de los glóbulos rojos, que se repelen entre sí y se oponen fisiológicamente a la agregación.
• Existen dos métodos principales 👨‍🔬para determinar la VSG: método de Wintrobe y método de Westergren. 
• La determinación de la VSG en poblaciones👥 generales es importante para interpretar los valores de referencia, es conocido la influencia del sexo y edad. Recientemente estudios muestran considerar otras variables como estilo de vida🏃‍♂️🍾🚬 ( ejercicio físico regular , consumo de alcohol y tabaquismo ) y las anomalías metabólicas comunes ( síndrome metabólico, IMC alto).
• Aunque la VSG se considera una medida de inflamación por infección, malignidad o enfermedad reumatológica, múltiples factores no inflamatorios afectan la sedimentación de glóbulos rojos. Estos factores alteran 🔺la VSG mediante mecanismos distintos: interferencia espacial, carga eléctrica y viscosidad.
• Debido a que los factores no inflamatorios influyen en la VSG, su especificidad para establecer un diagnóstico de afecciones inflamatorias es moderada. ▶️📝👨‍⚕️Sin embargo la prueba tiene un papel importante con indicaciones especificas significativas en la artritis reumatoide, la arteritis temporal, la polimialgia reumática y el mieloma.
• Finalmente la sensibilidad y especificidad de VSG no son altas, pero a pesar de sus limitaciones la prueba tiene como  ventajas la  familiaridad, simplicidad, velocidad y bajo costo que pueden ser usadas en algunos escenarios.

Estudios de la serie Roja

La hematologia es la ciencia que  estudioa  las anomalias de la sangre, la sangre esta compuesta por celulas, proteinas que dan gran utilidad al ser humano , un analisis de sangre incluye el hemograma, extendido periferico y demas pruebas como marcadores , el estudio del hierro entre otros, 

Existen un sin numero de enfermedades asociadas a la sangre que prodrian ser cronicas, infecciosas , de recuperacion o sin recuperacion, hoy en dia la tecnologia ha innovado tanto que es mas facil y de mejor calidad  el diagnostico de estas enfermedades, a continuancion te presento nuevos analisis que hoy en dia se estan realizando para la identificacion de patologias eritrocitarias:

 

 

 

Las hemoglobinopatias  son parte de las alteracione en la serie roja para la detección de esta se utiliza la electroforesis según estudios se estima que se han descubierto mas de 500 hemoglobinopatias . Algunas hemoglobinas pueden ser S,C, D asi como la A, A2 y la F estas se diferencian por la electroforesis.

Tambien hoy en dia exite otra prueba conocida como prueba de falciformacion. Esta se usa para el diagnostico de anemias drepanocíticas esta prueba se basa en inducir eritrocitos en un estado de hipoxia , se hace con un agente reductor conocido como metabisulfito o ditionito sodico al 2 % para este análisis se usa microscopio óptico .

Hoy en dia también se puede calcular la vida media de los eritrocitos mediante una radioactividad de muestras de sangres sucesiva esto para reducir hasta el 50 % de su vida inicial. Esta técnica se utiliza para el diagnostico de anemias hemolíticas ya que la vida media de los eritrocitos esta acortada .Cuando existe una hemorragia pueden verse afectados los resultados .

Tecnica de resistencia globular osmótica se usa para medir la capacidad de los eritrocitos . se realiza mesclando los eritrocitos a medios hipotónicos crecientes. Normalmente los eritrocitos se hemolizan cuando mesclamos con solución salina al 0,5% y se completa con la solución al 0,35%  estos valores suelen aumentar cuando a 0,6 y 0, 4 % cuando se emplean eritrocitos encubados a 37 grados durante 24 horas . La resistencia globular osmótica en la esferosis hereditaria y esta es mas sensible a la prueba encubada que a la inmediata .

Test de Ham

Esta prueba es cuando encubamos los eritrocitos a 37 grados frente al suero del paciente acidificado y frente a un suero control homologo también acidificado y este se considera que esta positivo cuando  observamos hemolisis en ambos casos , esto es a causa de de la activación del complementopor el efecto del ph . Esta prueba también es conocida como prueba de hemolisis en suero acidificado , se solicita en la hemoglobinuria paroxística nocturna .

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12 cuidados que debes conocer sobre el MICROSCOPIO

 

En nuestro trabajo uno de los instrumentos mas importantes es el microscopio, es importante darle el uso correcto y el mantenimiento necesario para tener una mayor durabilidad de nuestro equipo.

Además de conocer el uso de como enfocar, que objetivo usar y que tipo de tinción realizar

 

 

Te presento los doce cuidados que debes tener con el microscopio.

1-      Enchufar y posteriormente encender el microscopio.

2-      Colocar la preparación en la platina del microscopio.

3-      Lo primero que debemos hacer es colocar el objetivo de menor aumento este nos permitirá tener una panorámica del preparado y así vamos a tener la zona de interés a analizar, después vamos a poder usar el objetivo de mayor aumento.

4-      No debemos mover el microscopio cuando la lampara este encendida.

5-      Si deseamos moverlo de lugar es importante debemos fijar los los tornillos de fijación que posee.

6-      No debemos tocar con los dedos los los oculares ya que nuestros dedos tienen grasa natural y los vamos a ensuciar.

7-      Después de analizar una muestra se debe de retirar del microscopio ya que el peso del porta objeto hace que se vaya descalibrando.

8-      Después de la jornada de trabajo debemos limpiar residuos de muestras y de aceite que se usó.

9-      Al momento de retirar el cubre objeto procura hacerlo despacio para no rallar la platina

10-  Después de usarlo debemos dejar el objetivo de menor aumento, la platina lo más próxima posible.

11-  Siempre se debe tener el microscopio en un lugar de trabajo no debemos estarlo moviendo a diferentes sitios, también es importante tenerlo en una mesa solidad libre de vibraciones.

12-  Los Microscopios después de su uso deben quedar guardados y tapados con fundas que son para ellos ya que esto los mantiene libres del polvo y la suciedad. existen papeles especiales para limpiarlos y no debemos usar agua, detergentes o cloros ya que estamos poniendo en riesgos las piezas más flexibles del él.

Desde hace muchos años el microscopio es un instrumento indispensable para los avances científicos y para el diagnóstico de enfermedades, tanto en la biología, microbiología, anatomía patológica entre otras ramas ha sido una herramienta indispensable. El científico que hizo el primer microscopio es un genio y hoy por hoy es y seguirá siendo admirado en el campo científico.

 

 

¡¡¡¡¡SABIAS QUE!!!!!

UN EXAMEN GENERAL DE ORINA SE REALIZA UN ANALISIS FISICO, ANALISIS QUIMICO Y ANALISIS MICROSCOPICO.